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      細胞培養三大步驟,科研人必看!
    1. 更新日期:2023-05-05      瀏覽次數:721
      • 01、復蘇

        細胞復蘇的原則: 快速融化
        必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。

        實驗前準備
        將水浴鍋提前預熱至37℃。
        細胞實驗室進行常規消毒,用75%酒精擦拭紫外線照射40min的超凈工作臺臺面,保證無菌。
        在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養瓶等即將使用的耗材及試劑。

        取出凍存管
        根據細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的對應編號。
        從液氮罐中取出細胞盒,取出所需的細胞,同時核對管外的編號。

        迅速解凍
        迅速將凍存管投入到已經預熱的水浴鍋中迅速解凍,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化。
        約1-2min后凍存管內液體完quan溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內。

        平衡離心
        用架盤天平平衡后,放入離心機中3000r/min離心3分鐘。

        制備細胞懸液
        吸棄上清液。
        向離心管內加入適量完quan培養液,吹打制成細胞懸液。
        用培養液懸液混懸沉淀細胞,細胞計數調整細胞濃度,放入培養箱中培養。

        細胞計數
        細胞濃度以5×10 5 /ml為宜。

        培養細胞
        將符合細胞計數要求的細胞懸液分裝入培養瓶內,將培養瓶放入37℃,5%CO 2 的培養箱內2-4h(或者24-48h)后換液繼續培養培養,換液的時間根據細胞情況而定。

        記錄復蘇日期
        結果分析
        判斷細胞復蘇成功與否,需要看復蘇后細胞貼壁率及細胞存活率(細胞存活率將凍存管內剩余的細胞,臺盼藍染色法檢測復蘇細胞的存活率。呈藍色的細胞為死細胞,活細胞不著色。用細胞計數板和計數器計數細胞,得出細胞存活率)。
        如果復蘇后95%以上的細胞貼壁,而且細胞的活性好,這就說明細胞復蘇的過程沒有問題。復蘇的細胞恢復到正常生長,達到正常的生長特性(比如細胞群體倍增時間等)后要再凍存以補充細胞儲存數量。

        ×× 初學者易犯錯誤 ××
        水浴鍋未提前預熱或者未預熱到37℃直接融化。
        水浴鍋內凍存管太多,導致傳熱不佳,使融化時間延長。
        離心前忘記平衡,導致離心機損壞和細胞丟失。
        一次復蘇細胞種類過多,忘記更換吸頭和吸管,導致細胞交叉污染。

        02、傳代

        1.傳代密度過高
        一旦細胞養太久至融合度過高(>90%)才傳代,容易使細胞產生老化現象,甚至是堆疊,再消化細胞時不易吹打成單顆細胞,即便再重新鋪盤傳代,細胞也無法回到原本的特性了。(如:單層細胞,沒長滿就發生堆疊現象)。

        解決方案
        盡量避免融合度過高,鏡下觀察融合度約達到80%即可傳代分盤。
        細胞融合度:在細胞培養中指的是細胞在培養表面(培養皿/瓶)所占的比例。

        2.傳代密度過低
        哺乳動物貼壁培養細胞,若細胞培養到 80-90%密度需要開始傳代,在傳代接種細胞密度過低,細胞間距離太遠,就無法在細胞間產生黏附及通信作用,幫助信號傳導并活化細胞;總體細胞量不足,分泌的生長因子濃度會不足以產生利于生長的微環境,以上皆會造成增殖速度遲緩或細胞死亡。

        解決方案
        細胞傳代時,要進行準確的細胞計數,確保鋪盤的密度。

        如何確定細胞的正確初始接種密度?

        美國細胞庫(ATCC)建議各類不同細胞株接種密度:
        細胞類型 接種密度
        常見腫瘤細胞株 2-4 x 10 6 viable cells/25cm 2
        成纖維細胞株 2-4 x 106 viable cells/25 cm2
        淋巴細胞/懸浮細胞 3-4 x 10 5 viable cells/ml
        雜交瘤 2 x 105 viable cells/ml
        成肌細胞 1-2 x 10 4 viable cells/ cm2 

        03、凍 存

        細胞凍存的基本原理: 慢凍
        手動降溫:將細胞依序放在4℃(30分鐘)、-20℃(1小時)、-80℃(過夜)后移至液氮中保存。
        程序降溫盒:是一般廣泛使用的降溫法,為一種特制冷凍容器(填充異丙醇或依靠特制金屬導熱),使細胞以每分鐘約-1℃的速度降至-80℃(過夜),然后移至液氮中保存。

        大家可以根據自身情況或者實驗條件選擇不同的凍存方式。

        細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存,可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來,這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞,可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種,起到了細胞保種的作用。

        細胞代謝過程需要各種蛋白酶的參與,而這些蛋白酶在環境溫度低于-70℃時會集體罷工,低溫貯藏的目的是通過超低溫使代謝活動近乎停止。細胞因此進入休眠狀態,使細胞“不會老",可以長期保存。

        因為凍融過程對所有細胞和組織都是有一定傷害的,因此,需要開發出有效的技術來防止細胞死亡和損傷。

        這時,低溫保護劑就發揮出它的作用了。

        低溫保護劑可保護細胞不受細胞內冰凍影響,目前多采用DMSO、甘油、乙二醇和丙二醇等滲透型低溫保護劑。它們的作用機制包括:自由進入細胞,取代水,使冰點下降,充當鹽的二次溶劑,提高細胞膜對水的通透性。

        但是,部分低溫保護劑在緩慢冷凍過程中雖然會保護細胞,但它們也會引起細胞毒性,尤其是在室溫下。因此,在標準的自制凍存液中,會含有血清,血清是用來降低細胞毒性的,但血清也不是完mei的。

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